Bakterier fra Escherichia coli-gruppen (koliforme bakterier). Koliforme bakterier funnet i drikkevann

Hvem er koliforme bakterier og hvor bor de?

GOST for koliforme bakterier

Det er utviklet en mellomstatlig standard for metoder for å identifisere og bestemme mengden av koliforme mikrober. Denne GOST sikrer mattrygghet. Ethvert produkt som er inkludert i GOST-listen må gjennomgå laboratorietesting. Etter laboratorietester som viser akseptable koliforme verdier, sendes produktene for salg. Følgende er underlagt obligatorisk forskning:

Vann.
Hermetikk.
Kjøttprodukter.
Dyre mat.
Redskap og utstyr.

Det er viktig å vite at GOST ikke gjelder melk og meieriprodukter. All melk og andre meieriprodukter som kjøpes i bulk eller i bulk må pasteuriseres for å drepe koliforme mikroorganismer. Pasteurisering – oppvarming til +80⁰С i 30 minutter.

GOST forplikter oss til å overvåke den sanitære og bakteriologiske tilstanden til vann. Vann tas for å bestemme tilstedeværelsen av koliforme bakterier fra:

Byens vannforsyningssystem.
Åpne vannreservoarer (elver, hav, reservoarer).
Kilder til drikkevann (brønner, kilder).
Svømmebassenger.
Avløpsvann (før og etter behandling).

Vask hendene!

Alle typer koliforme bakterier drepes ved koking eller pasteurisering. Det vil ikke være igjen Escherichia- og Salmonella-toksiner i melk, kjøtt og vann ved temperaturer over + 60⁰C. Dørhåndtak eller bordflater bør tørkes av med en desinfiserende løsning. Koliforme bakterier drepes øyeblikkelig av alkohol eller et annet antibakterielt middel. Men den mest pålitelige måten å forhindre tarmsykdommer, ifølge GOST og livserfaring, er å vaske hendene med såpe. Det alkaliske miljøet til såpe ødelegger veggene til mikrober. Hvis det ikke er mulig å vaske hendene, for eksempel på veien, bruk desinfiserende våtservietter eller håndgelé.

Innholdsfortegnelse for emnet "Sanitær og mikrobiologisk studie av jord. Mikroflora av vannforekomster.":

Mellom grupper av sanitærindikerende mikroorganismer det er ingen klart definerte grenser. Noen mikroorganismer er indikatorer på både fekal og oral kontaminering. Noen er indikatorer på selvrensende prosesser. I denne forbindelse betraktes alle hellige natursteder som indikatorer på biologisk forurensning.

Gruppe A av sanitærindikerende mikroorganismer. Inkluderer innbyggere i tarmene til mennesker og dyr. Mikroorganismer betraktes som indikatorer på fekal forurensning. Det inkluderer koliformer - Escherichia, Enterococcus, Proteus, Salmonella. Også inkludert i gruppe A er sulfittreduserende clostridier (Clostridium petfringens, etc.), termofile, bakteriofager, bakterieoider, Pseudomonas aeruginosa, candida, Akinetobacter og aeromonas.

Gruppe B av sanitærindikerende mikroorganismer. Inkluderer innbyggere i øvre luftveier og nasopharynx. Mikroorganismer betraktes som indikatorer på oral kontaminering. Det inkluderer viridans, a- og (3-streptokokker, stafylokokker (plasmakoagulerende, lycytinasepositive, hemolytiske og antibiotikaresistente; i noen tilfeller bestemmes også typen Staphylococcus aureus).

Gruppe C av sanitærindikerende mikroorganismer. Inkluderer saprofytiske mikroorganismer som lever i det ytre miljø. Mikroorganismer blir sett på som indikatorer på selvrenseprosesser. Det inkluderer proteolytiske bakterier, ammonifiserende bakterier og nitrifiserende bakterier, noen sporedannende bakterier, sopp, actinomycetes, cellulobacteria, bdellovibrios og blågrønnalger.

Hovedgrupper av sanitærindikerende mikroorganismer

Til de viktigste sanitære indikator mikroorganismer inkluderer koliforme bakterier, enterokokker, Proteus, salmonella, Clostridium perfringens, termofile bakterier og bakteriofager av enterobakterier (kolifager).

Coli-bakterier

Escherichia coli la grunnlaget for hele SPM-gruppen. Koliformer inkluderer forskjellige medlemmer av Enterobacteriaceae-familien. Avhengig av formålet og formålet med studien stilles det ulike krav til sanitærindikative koliformer. De er konvensjonelt delt inn i tre undergrupper, og under forskjellige omstendigheter blir faktumet av deres tilstedeværelse brukt til bakteriologisk karakterisering av en gjenstand eller et substrat.

Undergruppe I Escherichia coli omfatter koliforme bakterier som søkes identifisert, men som ikke bør være tilstede ved undersøkelse av gjenstander og substrater som er «rene» av natur eller som har blitt rene som følge av deres bearbeiding (for eksempel termisk). Gruppen av objekter som har slike egenskaper inkluderer følgende. Drikke (artesisk, klorert kran, brønn) og destillert vann (hentet fra en destilleri eller rørledning). Termisk bearbeidede matprodukter (koteletter, pølser, fisk, etc.). Prøver tatt fra tykkelsen på produktet analyseres.

Melk(tatt fra pasteuriseringsapparatet før det går inn i melkerørledningene), supper, sauser, kompotter, hovedretter (hentet fra kjelene). Vasking tatt under overvåking av effektiviteten av desinfeksjonsbehandling i den foreskrevne tidsrammen (ikke tidligere enn 45 minutter og ikke senere enn 1 time etter behandling).

Bakterier fra denne undergruppen av Escherichia coli fermenter laktose og glukose eller bare glukose til gass ved 37 °C og viser ikke oksidaseaktivitet. Denne undergruppen inkluderer Escherichia ha //, Klebsiella, Citrobacter, Enterobacter og andre representanter for familien Enterobacteriaceae. Deres tilstedeværelse er tillatt i gjenstander som ikke er klassifisert som "rene".

Undergruppe II Escherichia coli inkluderer koliforme bakterier som indikerer ubestemt fekal forurensning. Mikroorganismer fermenterer laktose og glukose til syre og gass ved 43-44,5 °C. Denne undergruppen inkluderer bakterier (E. coli, Klebsiella, Citrobacter, Enterobacter, etc.), som beholder evnen til å danne gasser ved høye temperaturer. Tilsvarende krav stilles til koliforme bakterier dersom det er umulig å beskytte underlaget mot forurensning. I dette tilfellet bør vi begrense oss til å bestemme bare indikatorer på epidemiologisk sykdom. Slike gjenstander inkluderer: vann fra åpne reservoarer, avløpsvann, jord og alle matvarer som det er høy risiko for forurensning av etter varmebehandling. I slike tilfeller undersøkes faste matvarer (overflatelag), flytende matvarer, andre og tredje retter samt utvasking fra utstyr og redskaper. Avlinger dyrkes ved 43-44,5 °C. E. coli er differensiert fra andre bakterier ved sin evne til å fermentere laktose og glukose eller bare glukose.

Undergruppe III Escherichia coli inkluderer koliforme bakterier, noe som indikerer fersk fekal forurensning. Et særtrekk ved bakterier i denne gruppen er evnen til å bryte ned laktose til gass ved 43-44,5 °C.

Et emne dedikert til de vi desinfiserer vann fra (se artikkelen "Legionærsykdom (legionellose)"). Men det er mange flere bakterier som lever i vann og som du må beskytte deg mot ved hjelp av for eksempel ultrafiltrering. Derfor er temaet vårt i dag bakterier i vannet vårt. Hvor vi skal fortelle litt om hvilke bakterier som ikke bør leve i vannet vårt.

Bakterier i vannet vårt er et uønsket fenomen av en rekke årsaker, som vi vil diskutere nedenfor. Bakterier generelt bestemmes ved mikrobiologisk analyse av vann, og uttrykkes som en total mikrobiell telling med en måleenhet " kolonidannende enheter", k.o.e. (eller k.u.o på ukrainsk, kolonidannende enheter - CFU på engelsk).

Det totale mikrobielle antallet gjenspeiler det totale nivået av bakterier i vannet, og ikke bare de som danner kolonier som er synlige for det blotte øye på næringsmedier under visse dyrkningsforhold.

Bakterier som helhet, uttrykt ved det totale mikrobielle antallet, inkluderer flere grupper og undergrupper av bakterier. Dette:

Koliforme bakterier (inkludert termotolerante).
Sulfittreduserende klostridier.

Noen få ord om clostridium. Clostridia er en slags standard. De er veldig seige, eller hvis vitenskapelig sett er motstandsdyktige mot desinfeksjon, noe som gjør dem til en slags indikator - det er ingen clustridia, og det er ingen andre, enda farligere mikroorganismer.

Og til slutt, la oss ta hensyn til den vanligste indikatoren - koliforme bakterier som en av snublesteinene i mikrobiologisk analyse av vann.

Snublesteinen er forresten at man ofte tror at dette er sykdomsfremkallende bakterier, og tar man en slurk slikt vann begynner dysenteri eller kolera nesten umiddelbart. Men dette er ikke helt sant for koliforme bakterier. I henhold til ordbokdefinisjonen,

Koliforme bakterier er bakterier av Escherichia coli-gruppen (koliforme bakterier, også kalt koliforme og koliforme bakterier) - en gruppe bakterier fra enterobakteriefamilien, betinget kjennetegnet ved morfologiske og kulturelle egenskaper, brukt av sanitær mikrobiologi som en markør for fekal forurensning

På vanlig språk betyr dette at alle bakterier som ligner litt på bakterien «Escherichia coli» (Escherichia coli, oppkalt etter Theodor Escherich; forkortet til E.coli) er slått sammen til en gruppe kalt «koliforme bakterier», det vil si bakterier. , lik "E.coli". I tillegg er koliforme organismer praktiske mikrobielle indikatorer på drikkevannskvalitet og har blitt brukt som sådan i mange år. Dette skyldes først og fremst det faktum at de er enkle å oppdage og kvantifisere.

Begrepet "koliforme organismer" (eller "koliforme bakterier") refererer til en klasse gramnegative, stavformede bakterier som primært lever og formerer seg i den nedre fordøyelseskanalen til mennesker og de fleste varmblodige dyr (som husdyr og vannfugler). ). Følgelig går de vanligvis inn i vann med fekalt avfall og er i stand til å overleve i det i flere uker, selv om de (i det store flertallet) er fratatt evnen til å formere seg.

Følgelig, hvis disse bakteriene finnes i drikkevann, betyr dette at det er en mulighet for vannforurensning fra avløpsvann.
Og for det andre, hvis det blant koliforme bakterier er virulente stammer (patogene varianter) av bakterier, kan det også forekomme sykdommer.

I tillegg identifiseres ofte en annen gruppe blant koliforme bakterier - termotolerante koliforme bakterier. Dette er bakterier som ligner på "Escherichia coli", og er i stand til å fordøye mat ved høyere temperaturer (44 - 45 o C) og inkluderer selve slekten Escherichia (bedre kjent som E. Coli) og noen andre.

Termotolerante koliforme bakterier er klassifisert som en egen undergruppe i mikrobiologisk analyse fordi de indikerer nylig fekal kontaminering. Dessuten er de relativt enkle å identifisere – så hvorfor ikke inkludere dem i analysen din?

Uansett, et økt nivå av bakterier i vannet er et alarmerende tegn, og når det dukker opp, må du gjøre noe med vannet (for eksempel begynne å bruke).

Så vi har laget en generell teoretisk oversikt over bakteriene i vannet vårt, og vi kan gå videre til praksis.

Noen ganger oppstår følgende situasjon: noen ønsker å utføre en mikrobiologisk analyse av vann. Han tar en vannprøve, tar den med til sanitær- og epidemiologisk stasjon, og der... Tusenvis og tusenvis av bakterier. Problemet er at dette ikke betyr at disse bakteriene var i kildevannet. Faktisk er det tre alternativer for deres utseende i en vannprøve:

bakterier er faktisk tilstede i vannet;
inn under installasjonen av utstyr og rørledninger;
det var feil prøvetaking for mikrobiologi.

For å utelukke den tredje årsaken til overflødig mengde bakterier i vann, må du ta en vannprøve på riktig måte. Følgelig gjør vi oppmerksom på viktig regler for forsvarlig prøvetaking vann for mikrobiologisk analyse. Ja, du trenger:

Bruk kun flasker som tidligere er desinfisert i autoklav.
Vask hendene med såpe før du tar en prøve.
Tuten på kranen som prøvene skal tas fra, må tørkes av med sprit eller brennes med en flamme fra en lighter eller fyrstikk.
Ta flasken fylt til toppen med vann til laboratoriet så raskt som mulig (for eksempel innen to timer).

Derfor kan vi konkludere: bakterier bør ikke være i vannet, ikke bare fordi de kan føre til sykdom, men også fordi de er en indikator på vannforurensning av biprodukter (for eksempel for mye organisk materiale, fekalt vann, etc.) . Disse dataene er med andre ord av liten verdi for påvisning av fekal forurensning og bør ikke betraktes som en viktig indikator ved vurdering av sikkerheten til drikkevannsforsyninger, selv om en plutselig økning i antall kolonier i analysen av vann fra et grunnvann kilden kan være et tidlig signal om akviferforurensning.

Følgelig er ikke bakterier i vannet vårt det som skal være der :)

1. Gjennomgang av litteraturkilder

.1 Taksonomi av Escherichia coli

Vitenskapelig klassifisering

Domene: Bakterier

Type: Proteobakterier

Klasse: Gammaproteobakterier

Ordre: Enterobacteriales

Familie: Enterobacteriaceae

Slekt: Escherichia

Art: Coli (Escherichia coli)

Internasjonalt vitenskapelig navn

Escherichia coli (Migula 1895)

1.2 Struktur og kjemisk sammensetning av en bakteriecelle

Den indre organiseringen av en bakteriecelle er kompleks. Hver systematisk gruppe av mikroorganismer har sine egne spesifikke strukturelle trekk.

Bakteriecellen er dekket med en tett membran. Dette overflatelaget, som ligger utenfor den cytoplasmatiske membranen, kalles celleveggen. Veggen utfører beskyttende og støttende funksjoner, og gir også cellen en permanent, karakteristisk form (for eksempel formen på en stang eller kokkus) og representerer det ytre skjelettet til cellen. Dette tette skallet gjør bakterier som ligner planteceller, noe som skiller dem fra dyreceller, som har myke skall. Inne i bakteriecellen er det osmotiske trykket flere ganger, og noen ganger titalls ganger høyere enn i det ytre miljøet. Derfor ville cellen raskt briste hvis den ikke var beskyttet av en så tett, stiv struktur som celleveggen.

Tykkelsen på celleveggen er 0,01-0,04 mikron. Den utgjør fra 10 til 50 % av den tørre massen av bakterier. Mengden materiale som utgjør celleveggen endres under bakterievekst og øker vanligvis med alderen.

Den viktigste strukturelle komponenten i veggene, grunnlaget for deres stive struktur i nesten alle bakterier som er studert til dags dato, er murein (glykopeptid, mukopeptid). Dette er en organisk forbindelse med en kompleks struktur, som inkluderer nitrogenbærende sukker - aminosukker og 4-5 aminosyrer. Dessuten har celleveggens aminosyrer en uvanlig form (D-stereoisomerer), som sjelden finnes i naturen.

Ved å bruke en fargemetode først foreslått i 1884 av Christian Gram, kan bakterier deles inn i to grupper: gram-positive og gram-negative .

Gram-positive organismer er i stand til å binde noen anilinfargestoffer, som krystallfiolett, og etter behandling med jod og deretter alkohol (eller aceton) beholde jod-fargestoffkomplekset. De samme bakteriene der dette komplekset blir ødelagt under påvirkning av etylalkohol (cellene blir misfarget) er klassifisert som gramnegative.

Den kjemiske sammensetningen av celleveggene til gram-positive og gram-negative bakterier er forskjellig. Hos grampositive bakterier inkluderer celleveggenes sammensetning, i tillegg til mukopeptider, polysakkarider (komplekse, høymolekylære sukkerarter), teichoic syrer (komplekse forbindelser i sammensetning og struktur, bestående av sukkerarter, alkoholer, aminosyrer og fosforsyre ). Polysakkarider og teichoic syrer er assosiert med veggrammen - murein. Vi vet ennå ikke hvilken struktur disse komponentene i celleveggen til gram-positive bakterier danner. Ved hjelp av elektroniske fotografier av tynne snitt (lagvis) ble det ikke påvist grampositive bakterier i veggene. Sannsynligvis er alle disse stoffene veldig tett sammenkoblet.

Veggene til gramnegative celler inneholder en betydelig mengde lipider (fett) assosiert med proteiner og sukker i komplekse komplekser - lipoproteiner og lipopolysakkarider. Det er generelt mindre murein i celleveggene til gram-negative bakterier enn i gram-positive bakterier. Veggstrukturen til gramnegative bakterier er også mer kompleks. Ved hjelp av et elektronmikroskop ble det funnet at veggene til disse bakteriene er flerlags.

Det indre laget består av murein. Over det er et bredere lag med løst pakkede proteinmolekyler. Dette laget er igjen dekket med et lag med lipopolysakkarid. Det øverste laget består av lipoproteiner.

Celleveggen er permeabel: gjennom den passerer næringsstoffer fritt inn i cellen, og metabolske produkter kommer ut i miljøet. Store molekyler med høy molekylvekt passerer ikke gjennom skallet.

Celleveggen til mange bakterier er omgitt på toppen av et lag med slimete materiale - en kapsel. Tykkelsen på kapselen kan være mange ganger større enn diameteren på selve cellen, og noen ganger er den så tynn at den kun kan sees gjennom et elektronmikroskop – en mikrokapsel.

Kapselen er ikke en essensiell del av cellen den dannes avhengig av forholdene som bakteriene befinner seg i. Den fungerer som et beskyttende deksel for cellen og deltar i vannmetabolismen, og beskytter cellen mot å tørke ut.

Den kjemiske sammensetningen av kapsler er oftest polysakkarider. Noen ganger består de av glykoproteiner (komplekse komplekser av sukker og proteiner) og polypeptider (slekten Bacillus), i sjeldne tilfeller - av fiber (slekten Acetobacter).

Slimete stoffer som skilles ut i underlaget av noen bakterier forårsaker for eksempel den slimete trådede konsistensen av ødelagt melk og øl.

Hele innholdet i en celle, med unntak av kjernen og celleveggen, kalles cytoplasma. Den flytende, strukturløse fasen av cytoplasmaet (matrisen) inneholder ribosomer, membransystemer, mitokondrier, plastider og andre strukturer, samt reservenæringsstoffer. Cytoplasmaet har en ekstremt kompleks, fin struktur (lagdelt, granulær). Ved hjelp av et elektronmikroskop har mange interessante detaljer om cellestrukturen blitt avslørt.

Det ytre lipoproteinlaget til bakterieprotoplasten, som har spesielle fysiske og kjemiske egenskaper, kalles cytoplasmatisk membran.

Inne i cytoplasmaet er alle vitale strukturer og organeller.

Den cytoplasmatiske membranen spiller en veldig viktig rolle - den regulerer inntreden av stoffer i cellen og frigjøring av metabolske produkter til utsiden.

Gjennom membranen kan næringsstoffer komme inn i cellen som følge av en aktiv biokjemisk prosess som involverer enzymer. I tillegg skjer syntesen av noen cellekomponenter i membranen, hovedsakelig komponenter i celleveggen og kapselen. Til slutt inneholder den cytoplasmatiske membranen de viktigste enzymene (biologiske katalysatorer). Det ordnede arrangementet av enzymer på membraner gjør det mulig å regulere deres aktivitet og forhindre ødeleggelse av noen enzymer av andre. Tilknyttet membranen er ribosomer - strukturelle partikler som protein syntetiseres på. Membranen består av lipoproteiner. Den er sterk nok og kan sikre den midlertidige eksistensen av en celle uten skall. Den cytoplasmatiske membranen utgjør opptil 20 % av cellens tørre masse.

I elektroniske fotografier av tynne seksjoner av bakterier fremstår den cytoplasmatiske membranen som en kontinuerlig tråd med en tykkelse på omtrent 75A, bestående av et lett lag (lipider) klemt mellom to mørkere (proteiner). Hvert lag har en bredde på 20-30A. En slik membran kalles elementær.

Mellom plasmamembranen og celleveggen er det en forbindelse i form av desmoser - broer. Den cytoplasmatiske membranen gir ofte opphav til invaginasjoner - invaginasjoner inn i cellen. Disse invaginasjonene danner spesielle membranstrukturer i cytoplasmaet som kalles mesosomer. Noen typer mesosomer er kropper skilt fra cytoplasmaet med sin egen membran. Tallrike vesikler og tubuli er pakket inne i disse membransekkene. Disse strukturene utfører en rekke funksjoner i bakterier. Noen av disse strukturene er analoger av mitokondrier. Andre utfører funksjonene til det endoplasmatiske retikulum eller Golgi-apparatet. Ved invaginering av den cytoplasmatiske membranen dannes også det fotosyntetiske apparatet til bakterier. Etter invaginering av cytoplasmaet fortsetter membranen å vokse og danner stabler, som analogt med plantekloroplastgranulat kalles tylakoidstabler. I disse membranene, som ofte fyller det meste av cytoplasmaet til bakteriecellen, er pigmenter (bakterioklorofyll, karotenoider) og enzymer (cytokromer) som utfører prosessen med fotosyntese lokalisert.

Cytoplasmaet til bakterier inneholder ribosomer - proteinsyntetiserende partikler med en diameter på 200A. Det er mer enn tusen av dem i et bur. Ribosomer består av RNA og protein. Hos bakterier er mange ribosomer fritt plassert i cytoplasmaet, noen av dem kan være assosiert med membraner.

Cytoplasmaet til bakterieceller inneholder ofte granuler av forskjellige former og størrelser. Imidlertid kan deres tilstedeværelse ikke betraktes som et permanent tegn på en mikroorganisme, det er vanligvis i stor grad knyttet til de fysiske og kjemiske forholdene i miljøet. Mange cytoplasmatiske inneslutninger er sammensatt av forbindelser som tjener som en kilde til energi og karbon. Disse reservestoffene dannes når kroppen tilføres tilstrekkelig med næringsstoffer, og omvendt brukes når kroppen befinner seg i forhold som er mindre gunstige når det gjelder ernæring.

Hos mange bakterier består granulat av stivelse eller andre polysakkarider - glykogen og granulosa. Noen bakterier, når de dyrkes i et sukkerrikt medium, har dråper fett inne i cellen. En annen utbredt type granulære inneslutninger er volutin (metachromatin granulat). Disse granulene består av polymetafosfat (et reservestoff som inneholder fosforsyrerester). Polymetafosfat tjener som en kilde til fosfatgrupper og energi for kroppen. Bakterier er mer sannsynlig å akkumulere volutin under uvanlige ernæringsmessige forhold, for eksempel svovelfrie medier. I cytoplasmaet til noen svovelbakterier er det dråper av svovel.

I tillegg til ulike strukturelle komponenter, består cytoplasmaet av en flytende del - den løselige fraksjonen. Den inneholder proteiner, ulike enzymer, t-RNA, noen pigmenter og lavmolekylære forbindelser - sukker, aminosyrer.

Som et resultat av tilstedeværelsen av lavmolekylære forbindelser i cytoplasmaet, oppstår det en forskjell i det osmotiske trykket til celleinnholdet og det ytre miljøet, og dette trykket kan være forskjellig for ulike mikroorganismer. Det høyeste osmotiske trykket er observert i gram-positive bakterier - 30 atm i gram-negative bakterier er det mye lavere enn 4-8 atm.

Kjernestoffet, deoksyribonukleinsyre (DNA), er lokalisert i den sentrale delen av cellen.

Bakterier har ikke en slik kjerne som høyere organismer (eukaryoter), men har sin analog - "kjerneekvivalenten" - nukleoiden , som er en evolusjonært mer primitiv form for organisering av kjernefysisk materie. Mikroorganismer som ikke har en ekte kjerne, men som har en analog av den, klassifiseres som prokaryoter. Alle bakterier er prokaryoter. I cellene til de fleste bakterier er hoveddelen av DNA konsentrert på ett eller flere steder. I bakterier er DNA pakket mindre tett, i motsetning til ekte kjerner; En nukleoid har ikke en membran, en nukleolus eller et sett med kromosomer. Bakteriell DNA er ikke assosiert med hovedproteinene - histoner - og er lokalisert i nukleoiden i form av en bunt med fibriller.

Noen bakterier har vedhengsstrukturer på overflaten; Den mest utbredte av dem er flageller - bevegelsesorganene til bakterier.

Flagellen er forankret under den cytoplasmatiske membranen ved hjelp av to par skiver. Bakterier kan ha en, to eller mange flageller. Deres plassering er forskjellig: i den ene enden av cellen, på to, over hele overflaten. Bakterielle flageller har en diameter på 0,01-0,03 mikron, lengden kan være mange ganger større enn lengden på cellen. Bakterielle flageller består av et protein - flagellin - og er vridd spiralformede filamenter.

1.3 Morfologi av Escherichia coli og dens representanter

coli mikroflora

Escherichia coli er en polymorf fakultativ anaerob kort (lengde 1-3 µm, bredde 0,5-0,8 µm) gramnegativ stav med en avrundet ende. Stammer i utstryk er ordnet tilfeldig, uten å danne sporer og peritrich. Noen stammer har en mikrokapsel og pili, og er mye funnet i de nedre tarmene til varmblodige organismer. De fleste stammer av E. coli er ufarlige, men serotype O157:H7 kan forårsake alvorlig matforgiftning hos mennesker.

Bakterier fra coli-gruppen vokser godt på enkle næringsmedier: kjøtt-peptonbuljong (MPB), kjøtt-peptonagar (MPA). På Endo medium danner de flate røde kolonier av middels størrelse. Røde kolonier kan ha en mørk metallisk glans (E. coli) eller ingen glans (E. aerogenes).

De har høy enzymatisk aktivitet mot laktose, glukose og andre sukkerarter, samt alkoholer. De har ikke oksidaseaktivitet. Basert på deres evne til å bryte ned laktose ved en temperatur på 37°C, deles bakterier inn i laktose-negative og laktosepositive Escherichia coli (LKP), eller koliforme, som dannes i henhold til internasjonale standarder. Fra LCP-gruppen er fecal coliforms (FEC) isolert, i stand til å fermentere laktose ved en temperatur på 44,5 ° C. coli lever ikke alltid bare i mage-tarmkanalen deres evne til å overleve en stund i miljøet gjør dem til en viktig indikator for å teste prøver for tilstedeværelse av fekal forurensning.

Vanlige koliforme bakterier (TCB) er gramnegative, ikke-sporedannende staver som er i stand til å vokse på differensielle laktosemedier, fermentere laktose til syre, aldehyd og gass ved en temperatur på 37 +/- 1°C i 24 - 48 timer.

Kolibakterier (kolibakterier) er en gruppe gramnegative staver som primært lever og formerer seg i nedre fordøyelseskanal hos mennesker og de fleste varmblodige dyr (som husdyr og vannfugler). Vvoda finnes vanligvis i fekalt avfall og er i stand til å overleve i det i flere uker, selv om (i de aller fleste) de ikke formerer seg.

Termotolerante koliforme bakterier spiller en viktig rolle i å vurdere effektiviteten av vannbehandling fra fekale bakterier. En mer nøyaktig indikator er E. coli (Escherichia coli), siden kilden til noen andre termotolerante koliformer ikke bare kan være fekalt vann. Samtidig er den totale konsentrasjonen av termotolerante koliforme bakterier i de fleste tilfeller direkte proporsjonal med konsentrasjonen av E. coli, og deres sekundære vekst i distribusjonsnettverket er usannsynlig (med mindre det er tilstrekkelig med næringsstoffer i vannet, ved temperaturer over 13 ° C.

Termotolerante koliforme bakterier (TCB) - er blant de vanlige koliforme bakteriene, har alle sine egenskaper og er i tillegg i stand til å fermentere laktose til syre, aldehyd og gass ved en temperatur på 44 +/- 0,5 ° C i 24 timer.

Inkluderer slekten Escherichia og, i mindre grad, individuelle stammer av Citrobacter, Enterobacter og Klebsiella. Av disse organismene er det bare E. coli som er spesifikt av fekal opprinnelse, og den er alltid tilstede i store mengder i ekskrementer fra mennesker og dyr og finnes sjelden i vann og jord som ikke har vært utsatt for fekal forurensning. Det antas at påvisning og identifisering av E. coli gir tilstrekkelig informasjon til å fastslå forurensningens fekale natur.

Kolibakterier finnes i store mengder i husholdningsavløpsvann, samt i overflateavrenning fra husdyrhold. I vannkilder som brukes til sentralisert drikke- og husholdningsvannforsyning, er antallet vanlige kolibakterier tillatt å ikke være mer enn 1000 enheter (CFU/100 ml, CFU – kolonidannende enheter), og termotolerante koliformer – ikke mer enn 100 enheter. I drikkevann skal koliforme bakterier ikke påvises i en 100 ml prøve. Tilfeldig introduksjon av koliforme organismer i distribusjonssystemet er akseptabelt i ikke mer enn 5 % av prøvene samlet i løpet av en 12-måneders periode, forutsatt at E. coli er fraværende.

Tilstedeværelsen av koliforme organismer i vann indikerer utilstrekkelig behandling, sekundær forurensning eller tilstedeværelse av overflødige næringsstoffer i vannet.

2. Materialer og forskningsmetoder

Når man undersøker relativt mikrobielt rent vann for tilstedeværelse av patogene mikroorganismer, er det nødvendig å konsentrere den ønskede mikrofloraen, som er inneholdt i ubetydelige mengder i vannet. Påvisning av patogener av tarminfeksjoner i vann fra åpne reservoarer og avløpsvann mot bakgrunnen av en dominerende masse saprofytisk mikroflora er mest effektiv når de ønskede bakteriene er konsentrert i akkumuleringsmiljøer som hemmer veksten av medfølgende mikroflora. Følgelig, når man analyserer vann som har varierende grad av generell mikrobiell forurensning, brukes visse metoder for å isolere patogen mikroflora.

Åpent vann er vanligvis preget av et betydelig innhold av suspenderte stoffer, dvs. turbiditet, ofte farge, lavt saltinnhold, relativt lav hardhet, tilstedeværelse av store mengder organisk materiale, relativt høy oksiderbarhet og betydelig bakterieinnhold . Sesongmessige svingninger i elvevannskvaliteten er ofte ganske skarpe. Under flom øker turbiditeten og bakteriell forurensning av vann kraftig, men hardheten (alkalinitet og saltholdighet) reduseres vanligvis. Sesongmessige endringer i vannkvalitet påvirker i betydelig grad driften av vannbehandlingsanlegg i visse perioder av året.

Antall mikrober i 1 ml vann avhenger av tilstedeværelsen av næringsstoffer i den. Jo mer forurenset vannet er med organiske rester, jo flere mikrober inneholder det. Åpne reservoarer og elver er spesielt rike på mikrober. Det største antallet mikrober i dem er lokalisert i overflatelagene (i et lag 10 cm fra overflaten av vannet) av kystsoner. Med avstand fra land og økende dybde synker antallet mikrober.

Elveslam er rikere på mikrober enn elvevann. Det er så mange bakterier i selve overflatelaget av slam at det dannes en film fra dem. Denne filmen inneholder mange filamentøse svovelbakterier og jernbakterier de oksiderer hydrogensulfid til svovelsyre og forhindrer derved den hemmende effekten av hydrogensulfid (fiskedød forhindres).

Elver i urbane områder er ofte naturlige resipienter av avløpsvann fra husholdnings- og fekalt kloakk, så innenfor befolkede områder øker antallet mikrober kraftig. Men etter hvert som elven beveger seg bort fra byen, avtar antallet mikrober gradvis, og etter 3-4 titalls kilometer nærmer den seg igjen sin opprinnelige verdi. Denne selvrensingen av vann avhenger av en rekke faktorer: mekanisk sedimentering av mikrobielle kropper; reduksjon i vannnæringsstoffer som er fordøyelige av mikrober; eksponering for direkte solstråler; sluker bakterier av protozoer, etc.

Patogener kan komme inn i elver og reservoarer med avløpsvann. Brucellosebasill, tularemiabasill, poliovirus, munn- og klovsykevirus, samt patogener av tarminfeksjoner - tyfusbasill, paratyfusbasill, dysenteribasill, Vibrio cholerae - kan vedvare i vann i lang tid, og vann kan bli en kilde til smittsomme sykdommer. Det er spesielt farlig for patogene mikrober å komme inn i vannforsyningsnettverket, noe som skjer når det ikke fungerer. Det er derfor etablert sanitærbiologisk kontroll over tilstanden til reservoarene og tappevannet som tilføres fra dem.

2.1 Hydrometrisk flytemetode for måling og bestemmelse av vannstrømningshastighet

For å måle og bestemme hastigheten på vannstrømmen, er det en flytemetode, som er basert på å spore bevegelsen til et objekt som senkes ned i strømmen (flåten) ved hjelp av instrumenter eller det blotte øye. Flottører kastes i vannet på små elver fra land eller fra båt. Ved hjelp av en stoppeklokke bestemmes tiden og passeringen av flottøren mellom to tilstøtende mål, avstanden mellom disse er kjent. Overflatehastigheten til strømmen er lik flottørens hastighet. Ved å dele avstanden som flyteren har tilbakelagt med observasjonstiden, oppnås strømningshastigheten.

2.2 Vanninnsamling, lagring og transport av prøver

Vannprøver for bakteriologisk analyse tas i samsvar med sterilitetsreglene: i sterile flasker eller med sterile enheter - flaskemålere i en mengde på 1 liter.

Det såkalte flaskebadometeret er praktisk for å samle vann fra åpne reservoarer, avløpsvann, vann fra svømmebassenger og brønner.

Retningslinjer for påvisning av patogener av tarmbakterielle infeksjoner i vann.

Når du tar vannprøver fra åpne reservoarer, bør følgende punkter gis: ved stagnasjonspunktet og på stedet for den raskeste strømningen (fra overflaten og i en dybde på 50 - 100 cm).

Flaskeflaskemåler. Badometre er enheter av forskjellige design for å ta vannprøver fra forskjellige dyp. I sin klassiske form er dette sylindre som kan senkes ned til en viss dybde, deretter lukkes og fjernes. Å lage et klassisk badometer selv er ikke lett. Men i stedet kan du bruke en enkel glass- eller plastflaske med en smal hals, vektet med en slags vekt og plugget med en kork, ideelt sett en kork. Tau er knyttet til flaskehalsen og til korken. Etter å ha senket flasken til ønsket dybde (hovedsaken er at den synker, det er det vekten er til), må du trekke ut lokket - så du bør ikke plugge den tett. Etter å ha gitt flasken tid til å fylles på ønsket dybde (1-2 minutter), trekkes den til overflaten. Dette bør gjøres så energisk som mulig - med høy stigningshastighet og en smal hals vil vann fra de overliggende lagene praktisk talt ikke komme inn.
Prøver som bringes til overflaten ved hjelp av et badometer bør også "tykkes" ved hjelp av et planktonnett, og deretter skal volumet av silt vann beregnes. Siden dette volumet skal være så stort som mulig, bør flaskemåleren gjøres så stort som mulig, bruk for eksempel en 2-liters glass- eller plastflaske eller et annet stort kar med smal hals. Merker bør også settes hver meter på tauet som flasken er bundet til for å bestemme prøvetakingsdybden.

Det første kontrollpunktet ved demningen (begynnelsen av stranden) er gjerdepunktet (TZ1).

Det andre kontrollpunktet ved båtstasjonen (enden av stranden) er hentepunktet (TZ2).

T31-første kontrollpunkt ved demningen (begynnelsen av stranden) T32-andre kontrollpunkt ved båtstasjonen (enden av stranden)

2.3 Prøvelagring og transport

Prøveundersøkelse i laboratoriet må starte så snart som mulig fra innsamlingsøyeblikket.

Analysen bør utføres innen 2 timer etter innsamling.

Hvis prøveleveringstiden og lagringstemperaturen ikke kan overholdes, bør prøven ikke analyseres.

2.4 Klargjøring av glassvarer for analyse

Laboratorieglass må vaskes grundig, skylles med destillert vann til vaskemidler og andre fremmede urenheter er fullstendig fjernet, og tørkes.

Reagensglass, flasker, flasker og hetteglass må forsegles med silikon- eller bomullsgaspropp og pakkes på en slik måte at kontaminering forhindres etter sterilisering under drift og lagring. Caps kan være metall, silikon, folie eller tykt papir.

Nye gummipropper kokes i en 2 % natriumbikarbonatløsning i 30 minutter og vaskes 5 ganger med vann fra springen (koking og vask gjentas to ganger). Deretter kokes korkene i destillert vann i 30 minutter, tørkes, pakkes inn i papir eller folie og steriliseres i en dampsterilisator. Tidligere brukte gummipropper desinfiseres, kokes i 30 minutter i springvann med nøytralt vaskemiddel, vaskes i springvann, tørkes, monteres og steriliseres.

Pipetter med innlagte bomullspinner skal legges i metallhylster eller pakkes inn i papir.

Når de er lukket, bør petriskålene plasseres i metallbokser eller pakkes inn i papir.

De tilberedte rettene steriliseres i en tørrvarmeovn ved 160-170°C i 1 time, regnet fra øyeblikket den angitte temperaturen er nådd. Sterilisert servise kan bare tas ut av tørkeskapet etter at det er avkjølt under 60 °C.

Etter analysen desinfiseres alle brukte skåler og rør i en autoklav ved (126±2)°C i 60 minutter. Pipetter desinfiseres ved å koke i en 2% NaHC03-løsning.

Etter avkjøling fjernes gjenværende media, deretter bløtlegges skålene og reagensglassene, kokes i vann fra springen og vaskes, etterfulgt av skylling med destillert vann.

Forberedt næringsagar ENDO helles i petriskåler og lar den stivne.

2.5 Membranfiltermetode

Metode for å bestemme antall E. coli-celler per volumenhet væske (coli-indeks); Essensen av metoden er å filtrere den analyserte væsken gjennom membranfiltre som holder på bakterier, hvoretter disse filtrene plasseres på et fast næringsmedium og bakteriekoloniene som dyrkes på det telles.

Klargjøring av membranfiltre

Membranfiltre skal klargjøres for analyse i henhold til produsentens anvisninger.

Klargjøring av filterapparatet

Filterapparatet tørkes av med en bomullspinne fuktet med alkohol og flamberes. Etter avkjøling plasseres et sterilt membranfilter på den nedre delen av filterapparatet (bordet) med en flambert pinsett, presset med den øvre delen av enheten (glass, trakt) og sikret med en enhet som er gitt i utformingen av enheten. .

Med membranfiltermetoden føres en viss mengde vann gjennom en spesiell membran med en porestørrelse på ca. 0,45 mikron.

Som et resultat forblir alle bakterier i vannet på overflaten av membranen. Deretter legges membranen med bakterier på et spesielt næringsmedium (ENDO). Deretter ble petriskålene snudd og plassert i en termostat i en viss tid og temperatur. Totalt koliforme bakterier (TCB) - inkubert ved en temperatur på 37 +/- 1°C i 24-48 timer For å bestemme termotolerante bakterier, utføres inokulering i et medium forvarmet til en temperatur på 44°C og inkubert ved samme. temperatur i 24 timer.

Mediet er lysfølsomt. Derfor er alle frøkopper beskyttet mot lys.

I løpet av denne perioden, kalt inkubasjon, er bakterier i stand til å formere seg og danne klart synlige kolonier som lett kan telles.

På slutten av inkubasjonsperioden blir avlingene undersøkt:

a) fravær av mikrobiell vekst på filtrene eller påvisning av kolonier på dem som ikke er karakteristiske for tarmbakterier (svampaktig, filmaktig med ujevn overflate og kant), gjør at forskningen kan fullføres på dette stadiet av analysen (18 -24 timer) med et negativt resultat for tilstedeværelsen av tarmbakterier fester seg i det analyserte volumet av vann;

b) hvis kolonier som er karakteristiske for E. coli påvises på filteret (mørk rød med eller uten metallisk glans, rosa og transparent), fortsettes studien og undersøkes mikroskopisk.

Hvis veksten av runde kolonier er crimson i fargen med en metallisk glans med en diameter på 2,0-3,0 mm - Escherichia coli 3912/41 (055:K59);

Hvis veksten av runde kolonier av karmosinrød farge med en diameter på 1,5-2,5 mm med en uklar metallisk glans - Escherichia coli 168/59 (O111:K58)

2.6 Regnskap for resultater

Etter en inkubasjonsperiode på 48 timer for vanlige koliforme bakterier og 24 timer for termotalerante bakterier, telles koloniene som er dyrket på platene.

Kolonier som vokste på overflaten, så vel som i dypet av agaren, ble talt ved hjelp av et forstørrelsesglass med femdobbelt forstørrelse eller en spesiell enhet med et forstørrelsesglass. For å gjøre dette settes koppen opp ned på en svart bakgrunn og hver koloni merkes fra bunnen med blekk eller glassblekk.

For å bekrefte tilstedeværelsen av OKB, undersøkes følgende:

alle kolonier, hvis mindre enn 5 kolonier vokste på filtrene;

minst 3 - 4 kolonier av hver type.

For å bekrefte tilstedeværelsen av TSD, undersøkes alle typiske kolonier, men ikke mer enn 10.

Antall kolonier av hver type telles.

Beregning og presentasjon av resultater.

Resultatet av analysen uttrykkes som antall kolonidannende enheter (CFU) av totalt koliforme bakterier i 100 ml vann. For å beregne resultatet, summeres antall kolonier bekreftet som totale koliforme bakterier dyrket på alle filtre og divideres med 3.

Siden denne metoden for vannanalyse bare innebærer å bestemme det totale antallet kolonier - danner bakterier av forskjellige typer, kan ikke resultatene tydelig bedømme tilstedeværelsen av patogene mikrober i vannet. Et høyt mikrobielt antall indikerer imidlertid generell bakteriologisk forurensning av vannet og høy sannsynlighet for tilstedeværelse av patogene organismer.

Hver utvalgt isolert koloni undersøkes for Gram-opprinnelse.

Gram flekk

Gramfarging er av stor betydning i taksonomien til bakterier, så vel som for den mikrobiologiske diagnostiseringen av infeksjonssykdommer. Et trekk ved Gram-flekken er ulik holdning til forskjellige mikroorganismer til fargestoffer av trifenylmetangruppen: gentian, metyl eller krystallfiolett. Mikroorganismer som tilhører gruppen gram-positive Gram (+), for eksempel stafylokokker, streptokokker, gir en sterk sammenheng med de angitte fargestoffene og jod. Fargede mikroorganismer blir ikke misfarget når de utsettes for alkohol, som et resultat av at mikroorganismene, med ekstra farging med Gram fuchsin (+), ikke endrer sin opprinnelige lilla farge. Gramnegative Gram (−) mikroorganismer (bakteroider, fusobakterier, etc.) danner med krystallinsk gentian eller metylenfiolett og jod en forbindelse som lett ødelegges av alkohol, som et resultat av at de blir misfarget og deretter farget med fuksin, og får en rød farge.

Reagenser: karbonløsning av gentianfiolett eller krystallfiolett, vandig løsning av Lugol, 96 % etylalkohol, vandig-alkoholisk løsning av fuksin.

Fargeteknikk. Et stykke filterpapir legges på det faste smøret og en karbonløsning av gentianfiolett helles på det i 1/2 til 1 minutt. Tøm fargestoffet og hell Lugols løsning i 1 minutt uten å skylle. Tøm Lugols løsning og skyll preparatet i 96 % alkohol i 1/2 til 1 minutt til fargestoffet slutter å løsne. Vask med vann. I tillegg farges med fortynnet fuchsin i 1/2 til 1 minutt. Tøm av fargestoffet, vask og tørk preparatet.

3. Forskningsresultater

.1 Mikrobiologisk analyse av vann i Pechersk-sjøen (ved å bruke eksempeletE. coli) i løpet av vårperioden (mai) av studien 2009-2013.

Som et resultat av tre ganger vannprøvetaking ved to prøvetakingspunkter (TZ1 - ved begynnelsen av stranden, nær demningen, TZ2 - slutten av stranden, båtstasjon), beregnet vi gjennomsnittsindikatorene for OKB og TKB, resultatene hvorav er presentert i tabell 3.1.

Tabell 3.1. Gjennomsnittlige indikatorer for OKB og TKB i vannet i Pechersk Lake for mai 2013.

Indikatoren for innholdet av E. coli-bakterier i henhold til OKB i begynnelsen og slutten av mai i TZ1 (nær demningen) er ikke forskjellig, og utgjør 195 CFU/cm3, som er 3,3 ganger mindre sammenlignet med vannet prøve tatt i TZ2 (ved båtstasjonen ) i begynnelsen av mai og 4,3 ganger flere i slutten av mai.

En studie av dynamikken i innholdet av E. coli i vannet i Lake Pechersk i mai 2013 ifølge SES bekreftet riktigheten av vår egen forskning og viste at TBC-indikatoren i TZ2 er 3,4 ganger høyere enn i TZ1 (iht. våre egne resultater, 3,3 ganger høyere).

Studie av endringer i OKB- og TKB-indikatorer for mai måned fra 2009 til 2013. viste stor variasjon i indikatorer, noe som er tydelig presentert i figur 3.1 - 3.2

Analyse av data fra helseinstitusjonen "Mogilev Zonal Center for Hygiene and Epidemiology" for begynnelsen av mai 2008-2013.

På slutten av analysen av data for begynnelsen av mai 2008-2013 fant vi at det i 2008 og 2012 var flere OKB i TZ1 enn i TZ2.

Analyse av data fra helseinstitusjonen "Mogilev Zonal Center for Hygiene and Epidemiology" for slutten av mai 2008-2013.

I følge SanPiN skal vanlige koliforme bakterier være fraværende i 100 ml drikkevann

I følge SanPiN skal termotolerante fekale koliformer være fraværende i 100 ml av drikkevannet som testes.

For åpne reservoarer, ifølge OKB, ikke mer enn 500 CFU per 100 ml vann, ifølge TKB, ikke mer enn 100 CFU per 100 ml vann.

Tilstedeværelsen av E. coli i vannet bekrefter forurensningens fekale natur.

I følge resultatene av målingene er kolibakterier til stede i små mengder i løpet av sommerens lavvannsperiode, vanligvis fra hundre til flere hundre enheter, og bare i perioder med flom øker de kort til 1000 eller flere enheter.

Lave verdier om sommeren kan skyldes flere faktorer:

) intens solstråling, som er skadelig for bakterier;

) økte pH-verdier om sommeren (vanligvis pH > 8 om sommeren, vinteren).< 8) за счет развития фитопланктона;

) frigjøring av planteplanktonmetabolitter i vannet, hemmer bakterieflora.

Med begynnelsen av høst-vintersesongen er disse faktorene betydelig svekket, og antall bakterier øker til et nivå på flere tusen enheter. De største ytterpunktene oppstår i perioder med snøsmelting, spesielt under flom, når smeltevann vasker bort bakterier fra overflaten av nedbørfeltet.

Det totale antallet kolonidannende bakterier midt på sommeren er lavere enn i vår-høstperioden, som er forbundet med intens solinnstråling, som er skadelig for bakterier.

Det største antallet mikrober i åpne vannforekomster finnes i overflatelagene (i et lag 10 cm fra vannoverflaten) i kystsonene. Med avstand fra land og økende dybde synker antallet mikrober.

Konklusjon

coli patogenbakterier

For å finne og identifisere E. coli ble det utført en mikrobiologisk analyse av prøver i begynnelsen av mai 2013. En statistisk analyse av data fra helseinstitusjonen "Mogilev Zonal Center for Hygiene and Epidemiology" for begynnelsen av mai 2008-2012 ble også utført.

På slutten av analysen ble det funnet at antall kolibakterier vi beregnet ikke oversteg den tillatte grensen.

På slutten av den statistiske analysen av data fra helseinstitusjonen "Mogilev Zonal Center for Hygiene and Epidemiology" for 2008-2012, ble det funnet at lavvannkoliforme bakterier er tilstede i små mengder om sommeren. Det totale antallet kolonidannende bakterier midt på sommeren er lavere enn i vår-høstperioden, på grunn av intens solinnstråling, som er skadelig for bakterier, og med begynnelsen av høst-vintersesongen øker antallet bakterier til et nivå på flere tusen enheter. De største ytterpunktene oppstår i perioder med snøsmelting, spesielt under flom, når smeltevann vasker bort bakterier fra overflaten av nedbørfeltet.

Bibliografi

1. Fomin G.S. Vann. Kontroll av kjemisk, bakteriell og strålesikkerhet i henhold til internasjonale standarder. Encyklopedisk oppslagsbok. M.: Forlag "Protector", 1995.

Dolgonosov B.M., Dyatlov D.V., Suraeva N.O., Bogdanovich O.V., Gromov D.V., Korchagin K.A. Informasjons- og modelleringssystem Aqua CAD - et verktøy for å administrere teknologiske regimer ved en vannforsyningsstasjon // Vannforsyning og sanitærteknologi. 2003. Nr. 6. s. 26-31.

Dolgonosov B.M., Khramenkov S.V., Vlasov D.Yu., Dyatlov D.V., Suraeva N.O., Grigorieva S.V., Korchagin K.A. Prognose for vannkvalitetsindikatorer ved innløpet til en vannforsyningsstasjon // Vannforsyning og sanitærutstyr 2004. Nr. 11. s. 15-20.

Kochemasova Z.N., Efremova S.A., Rybakova A.M. Sanitær mikrobiologi og virologi. M.: Medisin, 1987.

SanPiN 2.1.5.980-00. Drenering av befolkede områder, sanitær beskyttelse av vannforekomster. Hygieniske krav til beskyttelse av overflatevann.

SanPiN 2.1.4.1074-01. Drikker vann. Hygieniske krav til vannkvalitet i sentraliserte drikkevannsforsyningssystemer. Kvalitetskontroll.

MUK 4.2.1018-01. Kontrollmetoder. Biologiske og mikrobiologiske faktorer. Sanitær og mikrobiologisk analyse av drikkevann.

Sanitær mikrobiologi

Anmelder: Hode Epidemiologisk avdeling PGMA,

Fag for sanitær mikrobiologi p3
Prinsipper og metoder for å utføre sanitære mikrobiologiske studier c3
Hovedgrupper av sanitærindikative mikroorganismer (SIM) c5
Sanitær mikrobiologi av vann p11
Sanitær mikrobiologi av jord p14
Sanitær mikrobiologi av luft p15
Sanitær og mikrobiologisk forskning i medisinske institusjoner s16
Testoppgaver s19

Sanitær mikrobiologi– en vitenskap som studerer mikrofloraen i miljøet og dens innvirkning på menneskers helse og den økologiske situasjonen i ulike biotoper. Hovedoppgaven til praktisk sanitær mikrobiologi er tidlig påvisning av patogen mikroflora i det ytre miljøet. Det bør huskes at mennesker og varmblodige dyr er hovedreservoaret av patogener for de fleste smittsomme sykdommer, og det overveldende antallet patogener overføres gjennom aerogene og fekal-orale mekanismer.

Begynnelsen på utviklingen av sanitær mikrobiologi kan vurderes i 1888, da den franske legen E. Mace foreslo å vurdere E. coli som en indikator på fekal forurensning av vann.

Prinsipper for sanitær mikrobiologisk forskning

Riktig prøvetaking. Det utføres i samsvar med alle nødvendige betingelser regulert for hvert objekt som studeres. Steriliteten opprettholdes. Hvis umiddelbar analyse ikke er mulig, lagres materialet i kjøleskapet i ikke lenger enn 6-8 timer.
Serialitet av de utførte analysene. De fleste av de studerte objektene inneholder et bredt spekter av mikroorganismer, fordelt ekstremt ujevnt. En rekke prøver tas fra ulike områder av objektet. I laboratoriet blandes prøvene og deretter måles nødvendig mengde materiale nøyaktig (vanligvis et gjennomsnitt av hele materialet som testes).
Gjentatt prøvetaking. Som regel endres sammensetningen av mikrofloraen ganske raskt i objektene som studeres, i tillegg er patogene mikroorganismer ujevnt fordelt i dem. Følgelig lar gjentatte prøvetaking en få mer adekvat informasjon.
Bruk av kun standard forskningsmetoder gjør det mulig å oppnå sammenlignbare resultater i ulike laboratorier.
Ved hjelp av et sett med tester: direkte (påvisning av patogener) og indirekte.
Vurdering av gjenstander basert på helheten av oppnådde resultater - under hensyntagen til andre hygieniske indikatorer (organoleptiske, kjemiske, fysiske, etc.)

Metoder for å utføre sanitærmikrobiologiske studier

Praktisk sanitær mikrobiologi bruker to hovedmetoder for å vurdere den sanitære og epidemiologiske tilstanden til miljøet.

JEG. Metoder for direkte påvisning av patogener. De er de mest nøyaktige og pålitelige kriteriene for å vurdere epidemisk fare for det ytre miljø. Den største ulempen er lav følsomhet.

Vanskeligheter med å isolere sykdomsfremkallende mikroorganismer på næringsmedier bestemmes av følgende faktorer:

Relativt lavt innhold av patogene mikroorganismer i det ytre miljø, som utgjør 1/30 000 av den totale artssammensetningen av mikrofloraen i det ytre miljø. I tillegg er det ujevnt fordelt.
Isolering av ett patogen indikerer ikke alltid tilstedeværelsen av andre typer patogener. Det vil si at det er nødvendig å forske på nesten alle patogener, noe som ikke er mulig.
Patogen variabilitet. Sistnevnte, som kommer inn i det ytre miljøet, får nye egenskaper som gjør dem vanskelige å gjenkjenne.
Konkurranseforhold mellom patogener og saprofytter når de dyrkes sammen på næringsmedier.
Utilstrekkelig selektivitet av kulturmedier og behov for å bruke forsøksdyr og vevskulturer.

II. Metoder for indirekte indikasjon på mulig tilstedeværelse av et patogen i det ytre miljø.

To kriterier brukes som en indirekte kan bedømme den mulige tilstedeværelsen av et patogen i det ytre miljøet:

Totalt antall mikrobielle (TMC)
Innhold av sanitære indikative mikroorganismer (SIM)

- Totalt antall mikrobielle (TMC) bestemmes ved å telle alle mikroorganismer i 1 gram eller 1 ml substrat.

I dette tilfellet går de ut fra antagelsen om at jo mer et objekt er forurenset med organiske stoffer, jo høyere er TMC og jo mer sannsynlig er tilstedeværelsen av patogener. Dette er imidlertid ikke alltid tilfelle, siden TMC kan være stor på grunn av saprofytter, mens patogener kan være fraværende. Derfor er det mer tilstrekkelig å vurdere TMC som en indikator på intensiteten av forurensning av det ytre miljø med organiske stoffer.

OMC bestemmes av to metoder:

Direkte telling. De utføres under et mikroskop ved hjelp av spesielle kameraer, for eksempel Petrov eller Goryaev, eller spesielle elektroniske tellere. Den forhåndstestede prøven homogeniseres og et fargestoff (vanligvis erytrosin) tilsettes. Direkte telling kan også utføres på membranfiltre som testvæsken eller suspensjonen føres gjennom. Metoden brukes i akutte tilfeller. Hvis det er nødvendig med et raskt svar om det kvantitative innholdet av bakterier (for eksempel ved ulykker i vannforsyningssystemet, ved vurdering av effektiviteten til behandlingsanlegg, etc.). Den største ulempen er manglende evne til å telle bakterier når deres klynger dannes eller når de "fester" seg til partiklene i substratet som studeres. Det er umulig å telle små mikroorganismer, for ikke å snakke om virus. Og til slutt er det umulig å skille levende fra døde mikroorganismer.
Kvantitativ inokulering på næringsmedier. Fra de tilberedte tifoldige seriefortynningene av testvæsken eller suspensjonen overføres 1 ml til sterile petriskåler og helles i MPA, smeltes og avkjøles til 45-50 0 C. Væskene blandes jevnt og etter at agaren har stivnet settes oppvasken i en termostat. Etter inkubering telles antall dyrkede kolonier og, med hensyn til fortynninger, beregnes antall levedyktige mikrober per volumenhet av objektet som studeres. I dette tilfellet identifiseres bare mesofile aerobe og fakultative anaerobe bakterier som er i stand til å formere seg på MPA. Dermed er de resulterende tallene betydelig lavere enn det sanne antallet mikroorganismer i objektet som studeres.

-Mikroorganismer kalles sanitære indikatorer, som du kan indirekte bedømme mulig tilstedeværelse av patogener i det ytre miljøet. Det antas at jo mer en gjenstand er forurenset med ekstrakter fra mennesker og dyr, desto flere sanitærindikerende mikroorganismer vil det være og desto mer sannsynlig er tilstedeværelsen av patogener.

Hovedkarakteristika for SPM:

Mikroorganismen må hele tiden leve i de naturlige hulrommene til mennesker og dyr og hele tiden slippes ut i det ytre miljø.
Mikroben skal ikke formere seg i det ytre miljøet (unntatt matvarer), eller formere seg bare litt.
Varigheten av overlevelse av en mikrobe i det ytre miljøet bør ikke være mindre, men enda lenger, enn for patogene mikroorganismer.
Stabiliteten til SPM i det ytre miljøet bør være lik eller overgå den for patogene mikroorganismer.
Mikroben skal ikke ha "dobler" eller analoger i det ytre miljøet som de kan forveksles med.
Mikroben bør ikke endre seg i det ytre miljøet, i det minste under overlevelsesperioden for patogene mikroorganismer.
Metoder for å identifisere og differensiere mikroorganismer må være enkle.

SPM-er er konvensjonelt delt inn i 3 grupper.

Det er ingen klart definerte grenser mellom dem; Noen mikroorganismer er både indikatorer på fekal og luftbåren forurensning. Alle hellige natursteder blir sett på som indikatorer på biologisk forurensning.

Gruppe A inkluderer innbyggere i tarmene til mennesker og dyr; mikroorganismer blir sett på som indikatorer på fekal forurensning. Det inkluderer de såkalte koliforme bakteriene - koliforme bakterier. (for drikkevann i henhold til det nye forskriftsdokumentet - Sanitær mikrobiologisk analyse av drikkevann. Retningslinjer MUK 4.2.1018-01 - denne gruppen kalles vanlige koliforme bakterier OKB); Koliforme bakterier - OCB, Escherichia, Enterococcus, Proteus, Salmonella; samt sulfittreduserende clostridia (inkludert Cl.perfringens), termofile, bakteriofager, Pseudomonas aeruginosa, Candida, Acinetobacter og Aeromonas.

Gruppe B inkluderer innbyggere i øvre luftveier og nasopharynx; mikroorganismer regnes som indikatorer på luftbåren forurensning. Det inkluderer alfa- og beta-hemolytiske streptokokker, stafylokokker (plasmakoagulerende, lecitinase-positive, hemolytiske og antibiotika-resistente; i noen tilfeller bestemmes typen stafylokokker - aureus).

Gruppe C inkluderer saprofytiske mikroorganismer som lever i det ytre miljøet; mikroorganismer betraktes som indikatorer på selvrensende prosesser. Det inkluderer ammonifiserende bakterier, nitrifiserende bakterier, noen sporedannende bakterier, sopp, actinomycetes, etc.

SPM-titer– det minste volumet av materialet som er undersøkt (i ml) eller vektmengde (i g) der minst én SPM-prøve ble funnet.

SPM-indeks– antall SPM-individer funnet i et visst volum (mengde) av objektet som studeres. For vann, melk og andre flytende produkter - 1 liter; for jord, matvarer - i 1 g Indeksen er den gjensidige av titeren, derfor kan omregningen av titeren inn i indeksen og tilbake gjøres ved å bruke formelen: T = 1000/I; I=1000/T – for væsker. Følgelig, for jord og matprodukter T = 1/I, I = 1/T.

Som en ekstra indikator brukes for tiden også den mest sannsynlige tallindeksen (MPI), som har konfidensgrenser innenfor hvilke det sanne antallet av den ønskede mikroben kan svinge med 95 % sannsynlighet. For å bestemme NHF gjennomføres studier 3, 5 og 10 ganger. Indikatoren bestemmes ved hjelp av spesielle Hoskens-Mouret-tabeller.

Hovedgrupper av DMA-er

Coli-bakterier

Under det generelle navnet "koliforme bakterier" - koliforme bakterier - familiens bakterier Enterobacteriaceae fødsel Escherichia, Citrobacter, Enterobacter, Klebsiella. I følge nye forskriftsdokumenter utstedt etter 2001, kalles denne gruppen vanlige koliforme bakterier - TCB. Egenskapene til disse gruppene er de samme koliforme bakterier inkluderer gram-negative, ikke-sporedannende staver som fermenterer laktose og glukose til syre og gass ved en temperatur på 37 0 C på 24 timer og ikke har oksidaseaktivitet. Bruken av to navn for samme bakteriegruppe skyldes bruk av reguleringsdokumenter fra forskjellige utstedelsesår. For eksempel, i gjeldende bestilling nr. 720 av 31. juli 1978 «Om forbedring av medisinsk behandling for pasienter med purulente kirurgiske sykdommer og styrkende tiltak for å bekjempe sykehusinfeksjoner», kalles denne gruppen koliforme og i resultatene av studier utført iht. denne ordren, vil det bli notert - Koliforme påvist (ikke oppdaget). Og ved undersøkelse av drikkevann etter retningslinjene fra 2001, vil det bemerkes - OKB oppdaget (ikke oppdaget).

Escherichia coli

Mikroorganismen er stamfaren til alle SPM-er. Dette er hovedrepresentanten for OCB-gruppen, avhengig av formålet og formålet med studien, denne gruppen inkluderer en undergruppe av TCB - termotolerante koliforme bakterier.

Vanlige koliforme bakterier - OKB - gram-, oksidase-, ikke-sporedannende staver, i stand til å vokse på differensielle laktosemedier, fermentere laktose til KG ved t 0 37 0 C i 24 timer.

Termotolerante koliforme bakterier - TCB - er inkludert i gruppen av OKB, har alle sine egenskaper, i tillegg er de i stand til å fermentere laktose til KG ved t 0 44 0 C i 24 timer.

Som en tilleggstest brukes bestemmelsen av glukosegjæring ved forskjellige dyrkingstemperaturer, siden det er kjent at OCB isolert fra klorert vann (kran, svømmebasseng, etc.) ikke er i stand til å forårsake gjæring av glukose med dannelse av gass kl. en temperatur på 44 0 C.

Betydelige ulemper E coli som SPM er:

1. Overflod av analoger i det ytre miljøet;

2. Utilstrekkelig motstand mot uheldige miljøpåvirkninger, for eksempel mot ulike kjemikalier og pH-endringer. Samtidig er noen patogene mikroorganismer, spesielt enterovirus, mer motstandsdyktige mot dem;

3. Høy variasjon, som et resultat av at problemene med dens økologi og diagnostikk ikke er fullstendig løst;

4. Relativt kort overlevelsestid i mat, mens noen patogene mikroorganismer (f.eks. S. sonnei, S. schottmuelleri enterovirus) vedvarer i lang tid;

5. E. coli formerer seg i vann med et innhold av organiske stoffer på minst 280 µg/l;

6. E. coli er en uklar indikator. For eksempel er det kjent utbrudd av salmonellose av vannopprinnelse med patogeninnhold på opptil 17 bakterier per 1 liter, mens innholdet E coli ikke oversteg 4 bakterier per 1 liter, det vil si at det forble nesten normalt.

Bakterieslekt Enterokokker

SPM-er ble foreslått av Houston (1910). Slekten inkluderer 16 arter, de viktigste lesjonene hos mennesker er forårsaket av E. faecalis, E. faecium, E. durans. Disse bakteriene oppfyller en rekke krav til SPM.

1. Enterokokker er faste innbyggere i menneskets tarm, til tross for at de er kvantitativt mindre enn E. coli.

2. Bakterier er praktisk talt ute av stand til å formere seg i det ytre miljø (temperaturen bør være 20 0 C og innholdet av organiske stoffer bør være 375 µg/l).

3. Enterokokker viser ikke uttalt variasjon i det ytre miljøet, noe som letter deres gjenkjennelse.

4. Enterokokker har ingen analoger i det ytre miljøet.

5. Enterokokker dør av i det ytre miljø mye tidligere enn E coli derfor indikerer de alltid fersk fekal forurensning.

6. Den viktigste fordelen med enterokokker er deres motstand mot uønskede ytre påvirkninger. Enterokokker differensieres ved hjelp av Sherman-resistenstester.

a) Enterokokker er motstandsdyktige mot oppvarming til 65 C i 30 minutter, noe som gjør dem til en indikator på kvaliteten på varmebehandling eller pasteurisering.

b) Enterokokker er resistente mot høye konsentrasjoner av NaCl (6,5-17%) - SPM i studiet av sjøvann.

c) Enterokokker er motstandsdyktige mot pH-svingninger (3-12), noe som gjør at de kan brukes som en indikator på fekal forurensning i sure og alkaliske produkter (avløpsvann). Under slike forhold E coli mister raskt sine egenskaper og blir vanskelig å gjenkjenne.

Basert på antall og forhold mellom enterokokker og E. coli, vurderes alvorlighetsgraden og tidspunktet for fekal kontaminering.

Bakterieslekt Proteus

De er den tredje (viktigste) gruppen av hellige natursteder. De ble foreslått som SPM tilbake i 1911. Slekten inkluderer 4 arter; er av størst betydning P.vulgaris, P.mirabilis. Hvori P.vulgaris anses vanligvis som en indikator på forurensning av en gjenstand med organiske stoffer (siden det oftere finnes i råtnende rester), og P.mirabilis – som en indikator på fekal forurensning (finnes oftere i avføring). P.rettgeri oppdages oftere i avføring under tarminfeksjoner - derfor indikerer påvisningen et epidemiologisk problem. Representanter for slekten Proteus gi en karakteristisk "krypende" vekst på Endo- og Levine-medier, som ofte dekker hele platen. Du kan isolere Proteus ved hjelp av Shukevich-metoden - ved å inokulere nykuttet MPA i kondensatet (i bunnen av reagensrøret) - hvis det er Proteus i prøven, vil det dekke hele agarhellingen.

Tilstedeværelsen av proteaer i vann, matvarer og vaskemidler indikerer alltid forurensning av en gjenstand med nedbrytende underlag og ekstremt dårlige sanitærforhold. Matvarer som er forurenset med Proteus kasseres vanligvis; Vann som inneholder Proteus bør ikke drikkes. Bestemmelse av Proteas anbefales når man studerer vann fra åpne reservoarer og terapeutisk gjørme. Og når du undersøker matprodukter, er deteksjonen av Proteus gitt av GOST.

Clostridium perfringens

Hvordan SPM ble foreslått tilbake i 1895, nesten samtidig med E coli. Wilson og Blair (1924-1925) foreslo et jern-sulfitt-medium, som tillater differensiering av clostridia av fekal opprinnelse fra clostridia som lever i det ytre miljø. Intestinale klostridier reduserer sulfitter og forårsaker svartning av mediet, mens frittlevende klostridier ikke har sulfittreduktase og ikke endrer fargen på mediet. Noen andre mikroorganismer kan også forårsake sverting av mediet, derfor, for å undertrykke veksten av medfølgende mikroflora, anbefales det å dyrke avlinger ved 43-44,5 0 C eller varme opp prøver ved 80 0 C i 15-20 minutter. At., Clostridium perfringens lett å fremheve og skille. Derimot, Clostridium perfringens Som SPM er det visse ulemper.

Bacillen er ikke alltid til stede i menneskets tarm.
Clostridium perfringens vedvarer i lang tid i det ytre miljø på grunn av sporulering. Derfor indikerer påvisningen av denne mikroorganismen at fekal forurensning en gang skjedde. Dette er en indikator på mulig tilstedeværelse av enterovirus.
Clostridium perfringens kan formere seg i det ytre miljø (i noen typer jord). For at sporer skal spire kreves et «temperatursjokk», dvs. oppvarming ved 70 0 C i 15-30 minutter.

For tiden er det foreslått å bedømme alderen for fekal forurensning av en gjenstand ved å sammenligne antall spore og vegetative former Clostridium perfringens. For dette formålet bestemmes antall clostridier i oppvarmede og uoppvarmede prøver.

A) I oppvarmede prøver vil indeksen bare representeres av sporeformer, noe som indikerer langvarig forurensning (i fersk avføring er 80-100 % vegetative celler).

B) I uoppvarmede prøver påvises vegetative og sporeformer.

Kvantitativ registrering av clostridia er gitt i studiet av jord, terapeutisk gjørme og åpent vann.

Clostridium perfringens bør ikke finnes i 100 ml vann i matvareanlegg. Mikroben er også identifisert i noen matvarer, men som en mulig årsak til matforgiftning. Kritisk nivå Clostridium perfringens i ferdige retter er lik 10 celler i 1 ml eller 1 g produkt. Ferdiglaget hermetikk skal ikke inneholde Clostridium perfringens.

Basert på forholdet mellom mengdene av E. coli, enterokokker og clostridier, bedømmes alder for fekal kontaminering.

Bakterieslekt Salmonella

De er de vanligste patogenene for akutte luftveisinfeksjoner og kan derfor være indikatorer på mulig tilstedeværelse av andre smittestoffer med lignende patogenese og epidemiologi.

De siste tiårene har Salmonella blitt utbredt i det ytre miljø. Antall bakteriebærere har økt (opptil 9,2%), og frigjøring av millioner og milliarder av celler til det ytre miljøet med hvert gram avføring hos dyr er enda mer uttalt. I avløpsvann fra kjøttforedlingsanlegg finnes salmonella i 80-100 % av prøvene, i renset avløpsvann – i 33-95 % av prøvene; bakterier finnes også i klorert avløpsvann.

Funksjoner av Salmonella som SPM

Disse mikroorganismene kommer bare inn i det ytre miljøet med avføring fra mennesker og dyr. Påvisningen deres indikerer alltid fekal forurensning.
Salmonella vokser ikke i jord; i vann formerer de seg bare ved høye temperaturer og høye nivåer av organisk materiale.
Når du bestemmer Salmonella, er det nødvendig å bestemme ikke bare prosentandelen av positive funn, men også NFP. Kun NHF gjør det mulig å forutsi økningen av salmonellose og andre akutte sykdommer med lignende etiologi.

Bakterievirus

Det foreslås å bruke bakteriofager av tarmbakterier (Escherichia, Shigella, Salmonella) som SPM. Tarmfager finnes hele tiden der det er bakterier som de er tilpasset. Imidlertid har de noen ulemper som indikatorer på mulig tilstedeværelse av patogene bakterier. For eksempel overlever bakteriofager i det ytre miljø lenger (8-9 måneder) enn de tilsvarende bakteriene (4-5 måneder). Men som indikatorer på fekal forurensning har bakteriofager betydelig verdi.

1. Bakteriofager isoleres fra avløpsvann med samme frekvens som mange patogene virus (poliomyelitt, Coxsackie, hepatitt A).

2. Likhet med enteropatogene virus komplementerer resistens mot desinfeksjonsmidler.

3. Metoder for å oppdage fager er ganske enkle. Inokulering utføres i buljong med en indikatorbakteriekultur. Etter inkubering lages subkulturer på tett agar, CFUer i forsøket og kontroll sammenlignes og konklusjoner trekkes.

Bakterieslekt Staphylococcus

Stafylokokker er representanter for normal mikroflora. Hovedstedet for deres lokalisering er slimhinnene i de øvre luftveiene til mennesker og noen varmblodige dyr, så vel som huden. Stafylokokker er også tilstede i tarmene til friske mennesker. Stafylokokker kommer inn i miljøet når de snakker, hoster, nyser og også fra huden. Forurensning av vann i reservoarer og svømmebassenger oppstår når folk bader, mens i svømmebassenger kan antallet stafylokokker nå titusenvis i 1 liter vann. Spredningen av stafylokokker i miljøet er nært knyttet til problemet med nosokomiale infeksjoner av stafylokokker, som er assosiert med transport av patogene stafylokokker hos mennesker, spesielt blant medisinsk personell. Alt dette lar oss klassifisere stafylokokker som indikatorbakterier for luftbåren forurensning.

Stafylokokker tilhører familien Micrococcaceae familie Staphylococcus. Utsikt S. aureus refererer til patogen.

Som sanitære indikatormikroorganismer har stafylokokker noen funksjoner:

De er upretensiøse til næringsmedier metoder for å indikere dem i miljøet er enklere enn for eksempel for streptokokker
Stafylokokker har betydelig motstand mot ulike fysiske og kjemiske faktorer. Basert på stafylokokkers motstand mot desinfeksjonsmidler (spesielt klorpreparater), foreslås det å bruke dem som SPM for vannforurensning i rekreasjonsområder i vannforekomster (inkludert sjøvann) og svømmebassenger.
De er en objektiv indikator på innendørs luftforurensning, siden det er en sammenheng mellom den sanitære og hygieniske tilstanden til lokalene, antall mennesker i dem, antall bærere av patogene stafylokokker og innholdet av stafylokokker i luften.

Bakterieslekt Streptokokker

Streptokokker, så vel som stafylokokker, er innbyggere i de øvre luftveiene hos mennesker og mange dyr. De er konstant og i store mengder tilstede i munnhulen og nasofarynx hos pasienter med kroniske streptokokkinfeksjoner i øvre luftveier, samt friske mennesker, og kan derfor komme inn i inneluften med bakteriell aerosol når de snakker og hoster.

Den største vanskeligheten med å bruke streptokokker som sanitære indikatormikroorganismer er at streptokokker representerer en stor gruppe som inkluderer et stort antall arter: fra saprofytter til patogene streptokokker som forårsaker sykdommer som skarlagensfeber, erysipelas, sepsis og mange purulente inflammatoriske prosesser.

Streptokokker tilhører familien Streptococcaceae, familie Streptokokker. Utsikt S.pyogenes er av størst betydning i menneskelig patologi .

I miljøet er streptokokker hovedsakelig representert av α-hemolytiske streptokokker (de ødelegger ikke røde blodlegemer fullstendig, de danner grønnaktige soner rundt koloniene). Dette skyldes det faktum at nesten 100 % av friske mennesker har α-hemolytiske streptokokker på overflaten av mandlene, mens β-hemolytiske streptokokker (forårsaker lysering av røde blodlegemer og danner en hemolysesone) finnes i kun 25-75 % Det er generelt akseptert at det er tilrådelig å vurdere sanitære. Indikerende luftmikrober inkluderer α- og β-hemolytiske streptokokker.

Egenskaper av streptokokker som SPM:

Streptokokker er ikke veldig stabile i miljøet, de kan bare overleve i flere dager i støvet av rom, på sengetøy og husholdningsartikler til pasienten. Imidlertid er perioden for bevaring av deres levedyktighet nær forventet levealder for en rekke patogene bakterier som kommer inn i miljøet av luftbårne dråper (for eksempel det forårsakende middelet difteri, etc.)
En indikator på nyere innendørs luftforurensning er α-hemolytiske streptokokker som den minst resistente. Streptokokker finnes ikke i luften i rom som ikke er bebodd av mennesker.
Metoder for indikasjon og identifisering av streptokokker er mer komplekse og arbeidskrevende sammenlignet med stafylokokker.

Termofile

Et spesielt sted blant SPM-er er okkupert av termofile mikrober, hvis tilstedeværelse i jorda eller vannet i reservoarer indikerer deres forurensning med gjødsel, kompost eller nedbrutt menneskelig avføring.

Termofile mikroorganismer inkluderer gram-positive bakterier, kokker, basiller, spirilla, actinomycetes og noen få typer sopp som aktivt kan reprodusere ved temperaturer på 60 0 C og over. De fleste termofile er aerobe.

Termofile mikroorganismer formerer seg i komposthauger og gjødsel, der overflatelagene på grunn av sin vitale aktivitet varmes opp til 60-70 0 C. Under slike forhold foregår prosessen med biotermisk nøytralisering av organiske masser som gjennomgår selvoppvarming, patogene mikroorganismer og E. coli dør.

Tilstedeværelsen av termofile stoffer indikerer således langvarig jordforurensning med kompost, mens koliforme bakterier (OCB) påvises i ubetydelige mengder. Og tvert imot, en høy titer av koliforme bakterier (OCB) med et lite antall termofile er en indikator på fersk fekal forurensning.

Termofiler fungerer også som sanitære indikatormikroorganismer for å karakterisere individuelle stadier av mineraliseringsprosessen til organisk avfall.

Analyse av legemidler fra benzensulfonylamidgruppen

Analyse av legemidler fra benzensulfonylamidgruppen. I kontroll- og analyselaboratoriet ble innholdet av sulfadimetoksin i tabletter bestemt ved nitritometri

Analyse av legemidler fra gruppen av salter av alifatiske karboksylsyrer og hydroksysyrer, askorbinsyre, alifatiske aminosyrer og deres derivater